[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
:: دوره 21، شماره 1 - ( دوماهنامه طب جنوب 1397 ) ::
جلد 21 شماره 1 صفحات 29-39 برگشت به فهرست نسخه ها
مطالعه بیان ژن CFL1 درنمونه‌های روده‌ای آدنوکارسینومای معده در جمعیت آذربایجان شرقی
سیده سعیده دریاباری1، رضا صفرعلیزاده* 2، محمدعلی حسین‌پورفیضی1، یعقوب مؤدب3، ریحانه روانبخش گاوگانی1
1- گروه زیست‌شناسی جانوری، دانشکده علوم طبیعی، دانشگاه علوم پزشکی تبریز، تبریز، ایران
2- گروه زیست‌شناسی جانوری، دانشکده علوم طبیعی، دانشگاه علوم پزشکی تبریز، تبریز، ایران ، safaralizadeh@tabrizu.ac.ir
3- مرکز تحقیقات بیماری‌های کبد و گوارش، دانشگاه علوم پزشکی تبریز، تبریز، ایران
چکیده:   (673 مشاهده)
زمینه: سرطان معده چهارمین سرطان شایع و دومین عامل مرگ ومیر ناشی از سرطان در سراسر جهان محسوب می‌شود. نواحی شمالی ایران از شمال غرب تا شمال شرق جزو مناطق دارای ریسک بالای این سرطان هستند. جهش ژنتیکی و تغییر در سطح بیان یکی از مهم‌ترین فاکتورهای تأثیرگذار در سرطان‌زایی و پیشرفت سرطان است. از جمله ژن‌هایی که دچار تغییر در سطح بیان می‌شوند می‌توان به ژن CFL1 اشاره نمود. CFL1 ایزوفرم غیرماهیچه‌ای خانواده پروتئینی ADF/cofolin هست. پروتئین کدشونده توسط این ژن، پلیمریزه و دپلیمریزه کردن F اکتین و G اکتین به روش وابسته به PH را انجام می‌دهد. در این مطالعه بیان این ژن درآدنوکارسینومای معده از نوع روده‌ای مورد بررسی قرار گرفت.
مواد و روش‌ها: در این مطالعه RNA تام از 26 نمونه بیوپسی آدنوکارسینومای معده از نوع روده‌ای استخراج شده و پس از سنتز cDNA آزمایش Real time PCR برای اندازه‌گیری بیان ژن انجام شد. داده‌های حاصل توسط نرم‌افزار SPSS ویرایش 16، REST و Sigmaplot مورد آنالیز قرار گرفت.
یافته‌ها: میزان بیان ژن کوفیلین در نمونه‌های توموری نسبت به نمونه‌های سالم حاشیه تومور به میزان معنی‌دار افزایش پیدا کرده است (05/0>P). همچنین شاخص زیستی برای ژن CFL1 88/0 به‌دست آمد.
نتیجه‌گیری: این ژن با شاخص 88/0 می‌تواند به‌ عنوان بیومارکر در سرطان معده استفاده شود. در مجموع یافته‌های این تحقیق نشان داد که میزان بیان CFL1 با ماهیت سرطانی تومورها ارتباط معناداری داشته است که این بدین معناست CFL1 احتمالاً می‌تواند پتانسیل بالایی به عنوان هدف جدید برای ژن درمانی در سرطان معده داشته باشد.
واژه‌های کلیدی: سرطان معده، ‌ آدنوکارسینوما، CFL1
متن کامل [PDF 832 kb]   (192 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: بیوشیمی
دریافت: ۱۳۹۶/۱۲/۷ | پذیرش: ۱۳۹۶/۱۲/۷ | انتشار: ۱۳۹۶/۱۲/۷
فهرست منابع
1. Rahman R, Asombang AW, Ibdah JA. Characteristics of gastric cancer in Asia. World J Gastroenterol 2014; 20(16):4483-90. [PubMed] [Google Scholar]
2. Malekzadeh R, Derakhshan MH, Malekzadeh Z. Gastric cancer in Iran: epidemiology and risk factors. Arch Iran Med 2009;12(6):576-83. [PubMed] [Google Scholar]
3. Kolahdoozan Sh, Sadjadi AR, Radmard AR, et al. Five common cancers in Iran. Archives of Iranian medicine 2010;13(2):143-6. [PubMed] [Google Scholar]
4. Azarbarzin SH, Hosseinpour Feizi1 MA, Sa-faralizadeh R, et al. The Value of miR-299-5p in Diagnosis and Prognosis of Intestinal-Type Gastric Adenocarcinoma. Bio-chem Genet 2016; 54(4):413–20 [PubMed] [Google Scholar]
5. Layke JC, Lopez PP. Gastric cancer: diagnosis and treatment options. American family physician 2004; 69(5): 1133-40. [PubMed] [Google Scholar]
6. Otterbein LR, Graceffa P, Dominguez R. The crystal structure of uncomplexed actin in the ADP state. Science 2001; 293(5530):708-11. [PubMed] [Google Scholar]
7. Vindin H, Gunning P. Cytoskeletal tropomyosins: choreographers of actin filament functional diversity. Journal of muscle research and cell motility 2013; 34(3-4): 261-74. [PubMed] [Google Scholar]
8. Wang W, Eddy R, Condeelis J. The cofilin pathway in breast cancer invasion and metastasis. Nature Reviews Cancer 2007;7(6):429-40. [PubMed] [Google Scholar]
9. Moon AL, Janmey PA, Louie KA, Drubin DG. Cofilin is an essential component of the yeast cortical cytoskeleton. The Journal of Cell Biology 1993; 120(2): 421-35. [PubMed] [Google Scholar]
10. Gunsalus KC, Bonaccorsi S, Williams E, Verni F, Gatti M, Goldberg ML. Mutations in twinstar, a Drosophila gene encoding a cofilin/ADF homologue, result in defects in centrosome migration and cytokinesis. The Journal of cell biology 1995; 131(5): 1243-59 [PubMed] [Google Scholar]
11. Aizawa H, Sutoh K, Tsubuki S, et al. Identification, characterization, and intracellular distribution of cofilin in Dictyostelium discoideum. Journal of Biological Chemistry 1995; 270(18):10923-32 [PubMed] [Google Scholar]
12. Kanellos G, Zhou J, Patel H, et al. ADF and Cofilin1 control actin stress fibers, nuclear integrity, and cell survival. Cell reports 2015;13(9):1949-64. [PubMed] [Google Scholar]
13. Vartiainen MK, Mustonen T, Mattila PK, Ojala PJ, Thesleff I, Partanen J, et al. The Three Mouse Actin-depolymerizing Factor/Cofilins Evolved to Fulfill Cell-Type–specific Requirements for Actin Dynamics. Molecular biology of the cell 2002;13(1):183-94. [PubMed] [Google Scholar]
14. Zuchero JB, Fu M-m, Sloan SA, et al. CNS myelin wrapping is driven by actin disassembly. Developmental cell 2015; 34(2):152-67. [PubMed] [Google Scholar]
15. Hotulainen P, Paunola E, Vartiainen MK, Lappalainen P. Actin-depolymerizing factor and cofilin-1 play overlapping roles in promoting rapid Factin depolymerization in mammalian nonmuscle cells. Molecular biology of the cell 2005;16(2):649-64. [PubMed] [Google Scholar]
16. Matsuzaki F, Matsumoto S, Yahara I, et al. Cloning and characterization of porcine brain cofilin cDNA. Cofilin contains the nuclear transport signal sequence. Journal of Biological Chemistry 1988; 263(23): 11564-8. [PubMed] [Google Scholar]
17. Lanford RE, Kanda P, Kennedy RC. Induction of nuclear transport with a synthetic peptide homologous to the SV40 T antigen transport signal. Cell 1986; 46(4): 575-82. [PubMed] [Google Scholar]
18. Wang W, Mouneimne G, Sidani M, Wyckoff J, Chen X, Makris A, et al. The activity status of cofilin is directly related to invasion, intravasation, and metastasis of mammary tumors. The Journal of cell biology 2006;173(3):395-404. [PubMed] [Google Scholar]
19. Arber S, Barbayannis FA, Hanser H, et al. Regulation of actin dynamics through phosphorylation of cofilin by LIM-kinase. Nature 1998; 393(6687): 805-9. [PubMed] [Google Scholar]
20. Nishita M, Wang Y, Tomizawa C, Suzuki A, Niwa R, Uemura T, et al. Phosphoinositide 3-kinase-mediated activation of cofilin phosphatase Slingshot and its role for insulin-induced membrane protrusion. Journal of Biological Chemistry 2004; 279(8): 7193-8. [PubMed] [Google Scholar]
21. Lee Y-J, Sheu T-J, Keng PC. Enhancement of radiosensitivity in H1299 cancer cells by actin-associated protein cofilin. Biochemical and biophysical research communications. Biochem Biophys Res Commun 2005; 335(2):286-91. [PubMed] [Google Scholar]
22. Lu L, Fu N, Luo X, et al. Overexpression of cofilin 1 in prostate cancer and the corresponding clinical implications. Oncology letters 2015; 9(6): 2757-61. [PubMed] [Google Scholar]
23. Tammana TS, Sahasrabuddhe AA, Bajpai VK, et al. ADF/cofilin-driven actin dynamics in early events of Leishmania cell division. J Cell Sci 2010; 123(11): 1894-901. [PubMed] [Google Scholar]
24. Babaei E, Montazeri V. Study of the Expression of Stem Cell Oct-4 Gene as a Diagnostic Molecular Marker in Specimens of Thyroid Papillary Carcinoma in Northwest of Iran 2016; 16(3): 292-9. (Persian) [Google Scholar]
25. Saffari Chaleshtary J, Moradi MT, Farrokhi E, et al. Study of P53 gene mutations in promoter and exons 2-4 and 9-11 in patient with gastric cancer by PCR-SSCP in Chaharmahal Va Bakhtiari province. Iran South Med J 2011; 14 (4) :220-9. (Persian) [Google Scholar]
26. Movahedi M, Afsharfard A, Moradi A, et al. Survival rate of gastric cancer in Iran. Journal of Research in Medical Sciences 2009;14(6): 367-73. [PubMed] [Google Scholar]
27. Castro MAA, Dal‐Pizzol F, Zdanov S, et al. CFL1 expression levels as a prognostic and drug resistance marker in nonsmall cell lung cancer. Cancer 2010; 116(15): 3645-55. [PubMed] [Google Scholar]
28. Zhou J, Wang Y, Fei J, et al. Expression of cofilin 1 is positively correlated with the differentiation of human epithelial ovarian cancer. Oncology letters 2012; 4(6):1187-90. [PubMed] [Google Scholar]
29. Wang WS, Zhong HJ, Xiao DW, et al. The expression of CFL1 and N‐WASP in esophageal squamous cell carcinoma and its correlation with clinicopathological features. Diseases of the Esophagus 2010; 23(6): 512-21. [PubMed] [Google Scholar]
30. Pérez-Martínez FC, Carrión B, Lucío MI, et al. Enhanced docetaxel-mediated cytotoxicity in human prostate cancer cells through knockdown of cofilin-1 by carbon nanohorn delivered siRNA. Biomaterials 2012; 33(32): 8152-9. [PubMed] [Google Scholar]
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

کد امنیتی را در کادر بنویسید >


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Daryabari S, Safaralizadeh R, Hosseinpour Feizi M A, Moaddab Y, Ravanbakhsh Gavgani R. Study of CFL1 Gene Expression in the Intestinal Samples of Gastric Adenocarcinoma in East Azarbaijan Population. Iran South Med J. 2018; 21 (1) :29-39
URL: http://ismj.bpums.ac.ir/article-1-912-fa.html

دریاباری سیده سعیده، صفرعلیزاده رضا، حسین‌پورفیضی محمدعلی، مؤدب یعقوب، روانبخش گاوگانی ریحانه. مطالعه بیان ژن CFL1 درنمونه‌های روده‌ای آدنوکارسینومای معده در جمعیت آذربایجان شرقی. طب جنوب. 1397; 21 (1) :29-39

URL: http://ismj.bpums.ac.ir/article-1-912-fa.html



دوره 21، شماره 1 - ( دوماهنامه طب جنوب 1397 ) برگشت به فهرست نسخه ها
دانشگاه علوم پزشکی بوشهر، طب جنوب ISMJ

Iranian South Medical Journal is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License which allows users to read,
copy, distribute and make derivative works for non-commercial purposes from the material, as long as the author of the original work is cited properly

Copyright © 2017, Iranian South Medical Journal| All Rights Reserved

Persian site map - English site map - Created in 0.05 seconds with 30 queries by YEKTAWEB 3658