دوره 23، شماره 1 - ( دو ماهنامه طب جنوب 1399 )
جلد 23 شماره 1 صفحات 26-14 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Anoosha F, Seyedalipour B, Hoseini S. Toxicity of Nickel Nanoparticles and Nickel Chloride on Activity of Antioxidant Enzymes and Level of Lipid Peroxidation in Liver and Serum of Rats. , Iran South Med J. 2020; 23 (1) :14-26
URL: http://ismj.bpums.ac.ir/article-1-1239-fa.html
URL: http://ismj.bpums.ac.ir/article-1-1239-fa.html
انوشا فرنوش، سیدعلیپور باقر، حسینی سیدمحمد. بررسی سمیت نانوذره نیکل و کلرید نیکل بر فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی و سطح پراکسیداسیون لیپیدی کبد و سرم موش صحرایی. , مجله طب جنوب. 1399; 23 (1) :14-26
فرنوش انوشا1 
، باقر سیدعلیپور*2 ، سیدمحمد حسینی3
، باقر سیدعلیپور*2 ، سیدمحمد حسینی3
1- گروه زیست سلولی و مولکولی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال، تهران، ایران
2- گروه زیست سلولی و مولکولی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران ،b.alipour81@gmail.com
3- گروه پاتوبیولوژی دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد بابل، بابل، ایران
2- گروه زیست سلولی و مولکولی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران ،
3- گروه پاتوبیولوژی دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد بابل، بابل، ایران
چکیده: (6159 مشاهده)
زمینه: با توسعه سریع در صنعت نانوفناوری، فهم سمیت نانوذرات و فاکتورهای مرتبط با خطرات آن‌ها بر موجودات زنده ضروری است. هدف از این پژوهش بررسی سمیت نانوذره نیکل و کلرید نیکل بر فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدان در سرم وکبد موش صحرایی می‌باشد.
مواد و روش‌ها: در این مطالعه تجربی، 48 سر موش صحرایی نر به طور تصادفی به 8 گروه تقسیم شدند. گروه کنترل هیج تیماری دریافت نکرد، گروه شم سرم فیزیولوژیک و گروه‌های تیمار، نانوذرات نیکل و کلرید نیکل با غلظت 5، 15 و 25 میلی‌گرم بر کیلوگرم به‌صورت تزریق درون صفاقی دریافت کردند. بعد از خونگیری، بافت کبد جدا، هموژنیزه و سپس فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدان، سطح مالون‌دی‌آلدئید و گلوتاتیون اندازه‌گیری شدند.
یافته‌ها: میانگین ظرفیت آنتی‌اکسیدان تام در گروه‌های نانوذره نیکل با غلظت 5، 15 و 25 میلی‌گرم بر کیلوگرم در سرم به ترتیب (003/0=P)، (034/0=P) و (006/0=P) و در کبد به ترتیب (012/0=P)، (029/0=P) و (005/0=P) نسبت به کنترل کاهش معنی‌داری نشان داد. میانگین سطح MDA سرم و کبد در گروه نانوذره نیکل و کلرید نیکل فقط با غلظت 25 میلی‌گرم بر کیلوگرم نسبت به کنترل (03/0=P) و (014/0=P) افزایش معنی‌داری نشان داد. میانگین فعالیت GST سرم در گروه‌های نانوذره نیکل با غلظت 15 و 25 به ترتیب کاهش معنی‌داری (014/0=P) و (04/0=P) نسبت به گروه کنترل نشان داد.
نتیجه‌گیری: نانوذره نیکل احتمالاً باعث القاء تولید رادیکال‌های آزاد و استرس اکسیداتیو می‌شود. کاهش ظرفیت آنتی اکسیدان تام و افزایش MDA نشان دهنده آسیب اکسیداتیو بافت کبد است.
مواد و روش‌ها: در این مطالعه تجربی، 48 سر موش صحرایی نر به طور تصادفی به 8 گروه تقسیم شدند. گروه کنترل هیج تیماری دریافت نکرد، گروه شم سرم فیزیولوژیک و گروه‌های تیمار، نانوذرات نیکل و کلرید نیکل با غلظت 5، 15 و 25 میلی‌گرم بر کیلوگرم به‌صورت تزریق درون صفاقی دریافت کردند. بعد از خونگیری، بافت کبد جدا، هموژنیزه و سپس فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدان، سطح مالون‌دی‌آلدئید و گلوتاتیون اندازه‌گیری شدند.
یافته‌ها: میانگین ظرفیت آنتی‌اکسیدان تام در گروه‌های نانوذره نیکل با غلظت 5، 15 و 25 میلی‌گرم بر کیلوگرم در سرم به ترتیب (003/0=P)، (034/0=P) و (006/0=P) و در کبد به ترتیب (012/0=P)، (029/0=P) و (005/0=P) نسبت به کنترل کاهش معنی‌داری نشان داد. میانگین سطح MDA سرم و کبد در گروه نانوذره نیکل و کلرید نیکل فقط با غلظت 25 میلی‌گرم بر کیلوگرم نسبت به کنترل (03/0=P) و (014/0=P) افزایش معنی‌داری نشان داد. میانگین فعالیت GST سرم در گروه‌های نانوذره نیکل با غلظت 15 و 25 به ترتیب کاهش معنی‌داری (014/0=P) و (04/0=P) نسبت به گروه کنترل نشان داد.
نتیجه‌گیری: نانوذره نیکل احتمالاً باعث القاء تولید رادیکال‌های آزاد و استرس اکسیداتیو می‌شود. کاهش ظرفیت آنتی اکسیدان تام و افزایش MDA نشان دهنده آسیب اکسیداتیو بافت کبد است.
فهرست منابع
1. Bobo D, Robinson KJ, Islam J, et al. Nanoparticle-Based Medicines: A Review of FDA-Approved Materials and Clinical Trials to Date. Pharm Res 2016; 33(10): 2373-87. [DOI:10.1007/s11095-016-1958-5]
2. Ma L, Zhao J, Wang J, et al. The Acute Liver Injury in Mice Caused by Nano-Anatase TiO2. Nanoscale Res Lett 2009; 4(11): 1275-85. [DOI:10.1007/s11671-009-9393-8]
3. Skocaj M, Filipic M, Petkovic J, et al. Titanium Dioxide in Our Everyday Life; Is It Safe?. Radiol Oncol 2011; 45(4): 227-47. [DOI:10.2478/v10019-011-0037-0]
4. Doreswamy K, Shrilatha B, Rajeshkumar T, et al. Nickel-induced Oxidative Stress in Testis of Mice: Evidence of DNA Damage and Genotoxic Effects. J Androl 2004; 25(6): 996-1003. [DOI:10.1002/j.1939-4640.2004.tb03173.x]
5. Cempel M, Nikel G. Nickel: A Review of Its Sources and Environmental Toxicology. Polish J Environ Stud 2006; 15(3): 375-82. [Link]
6. Saini S, Nair N, Saini MR. Embryotoxic and Teratogenic Effects of Nickel in Swiss Albino Mice during Organogenetic Period. Biomed Res Int 2013: 701439. [DOI:10.1155/2013/701439]
7. Das KK, Buchner V. Effect of Nickel Exposure on Peripheral Tissues: Role of Oxidative Stress in Toxicity and Possible Protection by Ascorbic Acid. Rev Environ Health 2007; 22(2): 157-73. [DOI:10.1515/REVEH.2007.22.2.157]
8. Ha HL, Shin HJ, Feitelson MA, et al. Oxidative Stress and Antioxidants in Hepatic Pathogenesis. World J Gastroenterol 2010; 16(48): 6035-43. [DOI:10.3748/wjg.v16.i48.6035]
9. Iavicoli I, Leso V, Fontana L, et al. Toxicological Effects of Titanium Dioxide Nanoparticles: A Review of in Vitro Mammalian Studies. Eur Rev Med Pharmacol Sci 2011; 15(5): 481-508. [PubMed]
10. Sycheva L, Zhurkov S, Iurchenko V, et al. Investigation of Genotoxic and Cytotoxic Effects of Micro-and Nanosized Titanium Dioxide in Six Organs of Mice in Vivo. Mutat Res 2011; 726(1): 8-14. [DOI:10.1016/j.mrgentox.2011.07.010]
11. Afifi M, Almaghrabi OA, Kadasa NM. Ameliorative Effect of Zinc Oxide Nanoparticles on Antioxidants and Sperm Characteristics in Streptozotocin-Induced Diabetic Rat Testes. Biomed Res Int 2015; 2015: 153573. [DOI:10.1155/2015/153573]
12. Hadrup N, Lam HR. Oral Toxicity of Silver Ions, Silver Nanoparticles and Colloidal Silvers Review. Regul Toxicol Pharmacol 2014; 68(1): 1-7. [DOI:10.1016/j.yrtph.2013.11.002]
13. Fu PP, Xia Q, Hwang HM, et al. Mechanisms of Nanotoxicity: Generation of Reactive Oxygen Species. J Food Drug Anal 2014; 22(1): 64-75. [DOI:10.1016/j.jfda.2014.01.005]
14. Deknudt G, Leonard A. Mutagenicity Tests with Nickel Salts in the Male Mouse. Toxicology 1982: 25(4): 289-92. [DOI:10.1016/0300-483X(82)90106-8]
15. Afifi M, Saddick S, Abu Zinada O. Toxicity of Silver Nanoparticles on the Brain of Oreochromis Niloticus and Tilapia Zillii. Saudi J Biol Sci 2016; 23: 754-60. [DOI:10.1016/j.sjbs.2016.06.008]
16. Eom HJ, Choi J. p38 MAPK Activation, DNA Damage, Cell Cycle Arrest and Apoptosis as Mechanisms of Toxicity of Silver Nanoparticles in Jurkat T Cells. Environ Sci Technol 2010; 44(21): 8337-42. [DOI:10.1021/es1020668]
17. Honarvar F, Vaezi G, Nourani M, et al. Oxidant/Antioxidant Index Evaluation in the Rat Embryo Induced by Nano-Silver Particle. New Cell Mol Biotechnol J 2016; 6(23): 53-60. (Persian) [Link]
18. Layali E, Tahmasbpour E, Jorsaraei SGA. Effects of Silver Nanoparticles on Lipid Peroxidation and Quality of Sperm Parameters in Male Rats. J Babol Univ Med Sci 2016; 18(2): 48-55. [Link]
19. Valipour-Chahardah-Charic S, Kesmati M, Vahdati A, et al. Oxidative Stress Indices in Rat Hippocampus Using the Memory Deficit Model Induced by Zinc Oxide Nanoparticles. Feyz 2015; 19(1): 38-46. [Link]
20. Soofi Zamiri F, Hajinezhad M, Samzadeh Kermani A, et al. Comparison the effects of ZnO nanoparticles and ZnO nanocomposites on Lipid Peroxidation in Rats. J North Khorasan Univ Med Sci 2017; 9(2): 263-70. (Persian) [DOI:10.18869/acadpub.jnkums.9.2.263]
21. Chen CH, Huang Y, Lin TF. Lipid Peroxidation in Liver of Mice Administrated with Nickel Chloride. Biol Trace Elem Res 1998; 61(2): 193-205. [DOI:10.1007/BF02784030]
22. Stark G. Functional Consequences of Oxidative Membrane Damage. J Membr Biol 2005; 205(1): 1-16. [DOI:10.1007/s00232-005-0753-8]
23. Mirzazadeh E, Khezri S, Abtahi Froushani SM. Effects of Quercetin on Improving the Damage Caused by Free Radicals in the Rat Models of Multiple Sclerosis. Iran South Med J 2019; 22(1): 1-15. [DOI:10.29252/ismj.22.1.1]
24. Parveen R, Baboota S, Ali J, et al. Effects of Silymarin Nanoemulsion Against Carbon Tetrachloride-induced Hepatic Damage. Arch Pharm Res 2011; 34(5): 767-74. [DOI:10.1007/s12272-011-0510-8]
25. Koyu A, Gokcimen A, Ozguner F, et al. Evaluation of the Effects of Cadmium on Rat Liver. Mol Cell Biochem 2006; 284(1-2): 81-5. [DOI:10.1007/s11010-005-9017-2]
26. Donskoy E, Donskoy M, Forouhar F, et al. Hepatic Toxicity of Nickel Chloride in Rats. Ann Clin Lab Sci 1986; 16(2): 108-17. [PubMed]
27. Kasprzak KS, Bare RM. In Vitro Polymerization of Histones by Carcinogenic Nickel Compounds. Carcinogenesis 1989; 10(3): 621-4. [DOI:10.1093/carcin/10.3.621]
28. Kanti Das T, Rina Wati M, Fatima-Shad K. Oxidative Stress Gated by Fenton and Haber Weiss Reactions and Its Association with Alzheimer 's Disease. Arch Neurosci 2014; 2(3): e20078. [DOI:10.5812/archneurosci.20078]
29. Ruas CBG, Carvalho CDS, Araujo HSS, et al. Oxidative stress biomarkers of exposure in the blood of cichlid species from a metalcontaminated river. Ecotoxicol Environ Saf 2008; 71(1):86-93. [DOI:10.1016/j.ecoenv.2007.08.018]
30. Kong L, Gao X, Zhu J, et al. Mechanisms involved in reproductive toxicity caused by nickel nanoparticle in female rats. Environ Toxicol 2016; 31(11): 1674-1683. [DOI:10.1002/tox.22288]
31. Masella R, Di Benedetto R, Varì R, et al. Novel mechanisms of natural antioxidant compounds in biological systems: involvement of glutathione and glutathione-related enzymes. J Nutr Biochem 2005; 16(10): 577-586. [DOI:10.1016/j.jnutbio.2005.05.013]
32. Messarah M, Klibet F, Boumendjel A, et al. Hepatoprotective role and antioxidant capacity of selenium on arsenic-induced liver injury in rats. Exp Toxicol Pathol 2012; 64(3): 167-174. [DOI:10.1016/j.etp.2010.08.002]
33. Razavipour ST, Behnammorshedi M, Razavipour R, et al. The toxic effect of nickel nanoparticles on oxidative stress and inflammatory markers. Biomedical Research 2015; 26(2): 370-374. [Link]
34. Misra M, Rodriguez RE, Kasprzak KS. Nickel induced lipid peroxidation in the rat: correlation with nickel effect on antioxidant defense systems. Toxicology 1990; 64(1): 1-17. [DOI:10.1016/0300-483X(90)90095-X]
35. Krezel A, Szczepanik W, Sokołowska M, et al. Correlations between complexation modes and redox activities of Ni (II)-GSH complexes. Chem Res Toxicol 2003; 16(7): 855-864. [DOI:10.1021/tx034012k]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
