دوره 26، شماره 6 - ( دو ماهنامه طب جنوب 1403 )
جلد 26 شماره 6 صفحات 390-369 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Jokar S, Marhamatizadeh M H, Mohebbi G H, Maryamabadi A. Some Phytochemical and Nutraceutical Properties of Sea Lettuce (Ulva Lactuca) from Bushehr Coasts, Iran. Iran South Med J 2024; 26 (6) :369-390
URL: http://ismj.bpums.ac.ir/article-1-1932-fa.html
URL: http://ismj.bpums.ac.ir/article-1-1932-fa.html
جوکار شادی، مرحمتی‌زاده محمدحسین، محبی غلامحسین، مریم‌آبادی عمار. بررسی برخی خصوصیات فیتوشیمیایی و نوتراسیتیکال کاهوی دریایی (Ulva lactuca) سواحل بوشهر، ایران. مجله طب جنوب. 1403; 26 (6) :369-390
1- گروه بهداشت مواد غذایی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد کازرون، ایران
2- گروه بهداشت مواد غذایی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد کازرون، ایران ،drmarhamati@gmail.com
3- مرکز تحقیقات زیست فناوری دریایی خلیج فارس، پژوهشکده علوم زیست پزشکی خلیج فارس، دانشگاه علوم پزشکی بوشهر، بوشهر، ایران
4- واحد تحقیق و توسعه، شرکت بازرسی فنی شاخه زیتون لیان، بوشهر، ایران
2- گروه بهداشت مواد غذایی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد کازرون، ایران ،
3- مرکز تحقیقات زیست فناوری دریایی خلیج فارس، پژوهشکده علوم زیست پزشکی خلیج فارس، دانشگاه علوم پزشکی بوشهر، بوشهر، ایران
4- واحد تحقیق و توسعه، شرکت بازرسی فنی شاخه زیتون لیان، بوشهر، ایران
چکیده: (740 مشاهده)
زمینه: اثرات زیست¬پزشکی و نوتراسیتیکال جلبک سبز کاهوی دریایی، با نام علمی (Ulva lactuca) در منابع علمی، به¬خوبی شناخته شده است. با توجه به اثرات غذا- دارویی این زیستمند دریایی و از طرفی وفور این جلبک در سواحل بوشهر، لذا از اهداف این مطالعه بررسی برخی خصوصیات فیتوشیمیایی، نوتراسیتیکال، آنتی¬اکسیدانی و ترکیبات شیمیایی کاهوی دریایی به¬دست آمده از سواحل خلیج‌فارس (بوشهر، ایران) در جهت یافتن ترکیبات مفید بود.
مواد و روش‌ها: پس از جمع‌آوری نمونه‌ها و آماده¬سازی آن‌ها، برخی خصوصیات فیتوشیمیایی، پروفایل اسیدهای چرب، پروفایل اسیدهای آمینه، متابولیت‌های ثانویه و فعالیت آنتی¬اکسیدانی به ترتیب با روش‌های استاندارد AOAC به شماره‌های 90-86 Cd و
3-25 Cd، کروماتوگرافی گازی- دتکتور یونش شعله (GC-FID)، کروماتوگرافی مایع با عملکرد بالا (HPLC)، کروماتوگرافی گازی- طیف سنجی جرمی (GC-MS) و روش مهاری رادیکال آزاد (DPPH) مورد بررسی قرار گرفتند.
یافته‌ها: آنالیز اسیدهای چرب، تعداد 17 اسید چرب با مقادیر مناسبی از امگا 3، 6 و 9 و آنالیز اسیدهای آمینه، تعداد 19 اسید آمینه با مقادیر قابل ملاحظه¬ای از اسیدهای آمینه ضروری (37 درصد) را نشان دادند. همچنین، نتایج GC-MS، تعداد 31 متابولیت ثانویه با گروه‌های عاملی و هسته‌های متفاوت را شناسایی نمود. کاهوی دریایی، در غلظت‌های مختلف، فعالیت‌های آنتی¬اکسیدانی بالاتری را نسبت به استاندارد اسکوربیک اسید نشان داد.
نتیجه‌گیری: بر اساس نتایج، کاهوی دریایی خلیج‌فارس، دارای ترکیبات تغذیه‌ای، متابولیت اولیه و ثانویه مفیدی با اثرات غذا-دارویی و زیست-پزشکی قابل ملاحظه‌ای می‌باشد. همچنین، این زیستمند دریایی، منبع غنی از ترکیبات زیست¬فعالی نظیر فنولی، آلکالوئیدی، اسیدهای آمینه و اسیدهای چرب اشباع و غیراشباع می¬باشد.
مواد و روش‌ها: پس از جمع‌آوری نمونه‌ها و آماده¬سازی آن‌ها، برخی خصوصیات فیتوشیمیایی، پروفایل اسیدهای چرب، پروفایل اسیدهای آمینه، متابولیت‌های ثانویه و فعالیت آنتی¬اکسیدانی به ترتیب با روش‌های استاندارد AOAC به شماره‌های 90-86 Cd و
3-25 Cd، کروماتوگرافی گازی- دتکتور یونش شعله (GC-FID)، کروماتوگرافی مایع با عملکرد بالا (HPLC)، کروماتوگرافی گازی- طیف سنجی جرمی (GC-MS) و روش مهاری رادیکال آزاد (DPPH) مورد بررسی قرار گرفتند.
یافته‌ها: آنالیز اسیدهای چرب، تعداد 17 اسید چرب با مقادیر مناسبی از امگا 3، 6 و 9 و آنالیز اسیدهای آمینه، تعداد 19 اسید آمینه با مقادیر قابل ملاحظه¬ای از اسیدهای آمینه ضروری (37 درصد) را نشان دادند. همچنین، نتایج GC-MS، تعداد 31 متابولیت ثانویه با گروه‌های عاملی و هسته‌های متفاوت را شناسایی نمود. کاهوی دریایی، در غلظت‌های مختلف، فعالیت‌های آنتی¬اکسیدانی بالاتری را نسبت به استاندارد اسکوربیک اسید نشان داد.
نتیجه‌گیری: بر اساس نتایج، کاهوی دریایی خلیج‌فارس، دارای ترکیبات تغذیه‌ای، متابولیت اولیه و ثانویه مفیدی با اثرات غذا-دارویی و زیست-پزشکی قابل ملاحظه‌ای می‌باشد. همچنین، این زیستمند دریایی، منبع غنی از ترکیبات زیست¬فعالی نظیر فنولی، آلکالوئیدی، اسیدهای آمینه و اسیدهای چرب اشباع و غیراشباع می¬باشد.
نوع مطالعه: پژوهشي |
موضوع مقاله:
دارو و غذا
دریافت: 1402/11/25 | پذیرش: 1403/2/22 | انتشار: 1403/4/20
دریافت: 1402/11/25 | پذیرش: 1403/2/22 | انتشار: 1403/4/20
فهرست منابع
1. Maltseva IA, Shcherbyna VV, Yakoviichuk AV, et al. Ecological determinants of algal communities of different types of ecosystems. OP Conf Ser: Earth Environ Sci 2022; 1049: 012072. [DOI]
2. Zhang L, Liao W, Huang Y, et al. Global seaweed farming and processing in the past 20 years. Food Prod Process and Nutr 2022; 4(23). [DOI]
3. Shaghuli S, Maryamabadi A, Mohebbi GH, et al. Determination of Fatty Acids Profile and Physicochemical Study of Sea Lettuce (Ulva lactuca) Oil from Bushehr City Coasts. Iran South Med J 2017; 20(2): 143-162. (Persian) [DOI]
4. Farasat N, Sheidai M, Riahi H, et al. Phylogenetic relationships of Ulva populations in the northern Coasts of the Persian Gulf and Oman Sea based on molecular analyses. Iran J Fisheries Sci 2022; 21(4): 1017-46. [DOI]
5. Dominguez H, Loret EP. Ulva lactuca, A Source of Troubles and Potential Riches. Mar Drugs 2019; 17(6): 357. [DOI]
6. Kazir M, Abuhassira-Cohen Y, Robin A, et al. Extraction of proteins from two marine macroalgae, Ulva sp. and Gracilaria sp., for food application, and evaluating digestibility, amino acid composition and antioxidant properties of the protein concentrates. Food Hydrocoll 2019; 87: 194-203. [DOI]
7. Rybak AS. Species of Ulva (Ulvophyceae, Chlorophyta) as indicators of salinity. Ecol Indic 2018; 85: 253-261. [DOI]
8. Peñalver R, Lorenzo JM, Ros G, et al. Seaweeds as a Functional Ingredient for a Healthy Diet. Mar Drugs 2020; 18(6): 301. [DOI]
9. Yu-Qing T, Mahmood K, Shehzadi R, et al. Ulva lactuca and its polysaccharides: Food and biomedical aspects. J Biol Agric and Healthc 2016; 6(1): 140-51. [Article]
10. Mohy El-Din SM. Temporal variation in chemical composition of Ulva lactuca and Corallina mediterranea. Int J Environ Sci Technol 2019; 16(10): 5783-96. [DOI]
11. Akbari M, Razavizadeh R, Sobhanian H, et al. Effects of salt stress on total lipid values, fatty acid profiles, omega-3, omega-6 and omega-9, in the brown algea Sargassum boveanum on Bushehr coast. J Plant Process and Funct 2022; 11(51): 117-140. (Persian) [Article]
12. Vladkova T, Georgieva N, Staneva A, et al. Recent Progress in Antioxidant Active Substances from Marine Biota. Antioxidants (Basel) 2022; 11(3): 439. [DOI]
13. Kotzaeroglou A, Tsamesidis I. The Role of Equilibrium between Free Radicals and Antioxidants in Depression and Bipolar Disorder. Medicines (Basel) 2022; 9(11): 57. [DOI]
14. Farasat M, Khavari-Nejad RA, Nabavi SM, et al. Antioxidant Activity, Total Phenolics and Flavonoid Contents of some Edible Green Seaweeds from Northern Coasts of the Persian Gulf. Iran J Pharm Res 2014; 13(1): 163-70. [Article]
15. Shebis Y, Iluz D, Kinel-Tahan Y, et al. Natural Antioxidants: Function and Sources. Food Nutr Sci 2013; 4(6): 643-649. [DOI]
16. Lobo V, Patil A, Phatak A, et al. Free radicals, antioxidants, and functional foods: Impact on human health. Pharmacogn Rev 2010; 4(8): 118-26. [DOI]
17. Kanwugu ON, Glukhareva TV, Danilova IG, et al. Natural Antioxidants in Diabetes Treatment and Management: Prospects of Astaxanthin. Crit Rev Food Sci Nutr 2022; 62(18): 5005-5028. [DOI]
18. D'Angelo Costa GM, Maia Campos PMBG. Efficacy of topical antioxidants in the skin hyperpigmentation control: A clinical study by reflectance confocal microscopy. J Cosmet Dermatol 2021; 20(2): 538-545. [DOI]
19. Gopeechund A, Bhagooli R, Neergheen VS, et al. Anticancer Activities of Marine Macroalgae: Status and Future Perspectives. In Biodiversity and Biomedicine. Academic Press: Cambridge, MA, USA 2020; 257-275. [DOI]
20. Sansone C, Brunet C, Noonan DM, et al. Marine Algal Antioxidants as Potential Vectors for Controlling Viral Diseases. Antioxidants (Basel) 2020; 9(5): 392. [DOI]
21. Milito A, Castellano I, Damiani E. From Sea to Skin: Is There a Future for Natural Photoprotectants? Mar Drugs 2021; 19(7): 379. [DOI]
22. Alves A, Sousa E, Kijjoa A, et al. Marine- Derived Compounds with Potential Use as Cosmeceuticals and Nutricosmetics. Molecules 2020; 25(11): 2536. [DOI]
23. Mohebbi GH, Nabipour I, Vazirizadeh A. The Sea, the Future Pharmacy. Iran South Med J 2014; 17(4): 748-788. (Persian) [Article]
24. Marhamati Z, Marhamatizadeh MH, Mohebbi GH. Evaluation of the Physicochemical, Antioxidant, and Antibacterial Properties of Tunichrome Released from Phallusia nigra Persian Gulf Marine Tunicate. J Food Qual 2021; 11. [DOI]
25. Álvarez-Gómez F, Korbee N, Figueroa FL. Analysis of Antioxidant Capacity and Bioactive Compounds in Marine Macroalgal and Lichenic Extracts Using Different Solvents and Evaluation Methods. Cienc mar 2016; 42(4): 271-288. [DOI]
26. El-Shafei R, Hegazy H, Acharya B. A Review of Antiviral and Antioxidant Activity of Bioactive Metabolite of Macroalgae within an Optimized Extraction Method. Energies 2021; 14(11): 3092. [DOI]
27. Kumar Y, Tarafdar A, Badgujar PC. Seaweed as a Source of Natural Antioxidants: Therapeutic Activity and Food Applications. J Food Qual 2021; 17. [DOI]
28. Sami FJ, Soekamto NH, Firdaus, et al. Bioactivity Profile of Three Types of Seaweed as an Antioxidant, UV-Protection as Sunscreen and Their Correlation Activity. Food Res 2021; 5(1): 441-447. [DOI]
29. Ghosh S, Sarkar T, Pati S, et al. Novel Bioactive Compounds from Marine Sources as a Tool for Functional Food Development. Front Mar Sci 2022; 9: 832957. [DOI]
30. Jadavi N, Vaziri S, Nabipour I, et al. Fat characteristics and fatty acid profile of sea cucumbers (Holothuria Scabra) obtained from the coasts of the Bushehr province -Iran. Iran South Med J 2015; 18(5): 992-1006. (Persian) [DOI]
31. Mohebbi GH, Vatanpour H, Vazirizadeh A, et al. Phospholipase A2 Activity of The Persian Gulf Upside-Down Jellyfish Venom (Cassiopea Andromeda). Iran South Med J 2017; 20(3): 287-300. (Persian) [Article]
32. Gargallo S, Calsamiglia S, Ferret A. Technical Note: A Modified Three-Step In Vitro Procedure to Determine Intestinal Digestion of Proteins. J Anim Sci 2006; 84(8): 2163-7. [DOI]
33. Devi GK, Thirumaran G, Manivannan K, et al. Element Composition of Certain Seaweeds from Gulf of Mannar Marine Biosphere Reserve; Southeast Coast of India. World J Dairy & Food Sci 2009; 4(1): 46-55. [Article]
34. Roleda MY, Heesch S. Chemical profiling of Ulva species for food applications: What is in a name? Food Chem 2021; 361: 130084. [Article]
35. Roleda MY, Lage S, Aluwini DF et al. Chemical profiling of the Arctic Sea lettuce Ulva lactuca (Chlorophyta) mass-cultivated on land under controlled conditions for food applications. Food Chem 2021; 341(Pt 1): 127999. [DOI]
36. Biancarosa I, Espe M, Bruckner CG, et al. Amino acid composition, protein content, and nitrogen-to-protein conversion factors of 21 seaweed species from Norwegian waters. J Appl Phycol 2017; 29(2): 1001-1009. [DOI]
37. Mæhre HK, Malde MK, Eilertsen KE, et al. Characterization of protein, lipid and mineral contents in common Norwegian seaweeds and evaluation of their potential as food and feed. J Sci Food Agric 2014; 94(15): 3281-90. [DOI]
38. Sánchez-García F, Mirzayeva A, Roldán A, et al. Effect of different cooking methods on sea lettuce (Ulva rigida) volatile compounds and sensory properties. J Sci Food Agric 2021; 101(3): 970-980. [DOI]
39. Trigo JP, Engström N, Steinhagen S, et al. In vitro digestibility and Caco-2 cell bioavailability of sea lettuce (Ulva fenestrata) proteins extracted using pH-shift processing. Food Chem 2021; 356: 129683. [DOI]
40. Steinhagen S, Enge S, Cervin G, et al. Harvest time can affect the optimal yield and quality of sea lettuce (Ulva fenestrata) in a sustainable sea-based cultivation. Front Mar Sci 2022; 9. [DOI]
41. Shrestha A, Acharya B, Farooque AA. Study of hydrochar and process water from hydrothermal carbonization of sea lettuce. Renewable Energy 2021; 163: 589-98. [DOI]
42. Ratnayake R, Liu Y, Paul VJ, et al. Cultivated Sea lettuce is a multiorgan protector from oxidative and inflammatory stress by enhancing the endogenous antioxidant defense system. Cancer Prev Res (Phila) 2013; 6(9): 989-99. [DOI]
43. Dellatorre FG, Avaro MG, Commendatore MG, et al. The macroalgal ensemble of Golfo Nuevo (Patagonia, Argentina) as a potential source of valuable fatty acids for nutritional and nutraceutical purposes. Algal Res 2020; 45: 101726. [DOI]
44. Garidel P, Fölting B, Schaller I, et al. The microstructure of the stratum corneum lipid barrier: mid-infrared spectroscopic studies of hydrated ceramide: palmitic acid: cholesterol model systems. Biophys Chem 2010; 150(1-3): 144-56. [DOI]
45. DiNicolantonio JJ, O'Keefe JH. Importance of maintaining a low omega-6/omega-3 ratio for reducing inflammation. Open Heart 2018; 5(2): e000946. [DOI]
46. Simopoulos AP, DiNicolantonio JJ. The importance of a balanced ω-6 to ω-3 ratio in the prevention and management of obesity. Open Heart 2016; 3(2): e000385. [DOI]
47. Simopoulos AP. Omega-3 Fatty Acids in Inflammation and Autoimmune Diseases. J Am Coll Nutr 2002; 21(6): 495-505. [DOI]
48. Simopoulos AP. The importance of the ratio of omega-6/omega-3 essential fatty acids. Biomed Pharmacother 2002; 56(8): 365-79. [DOI]
49. Tabarsa M, Rezaei M, Ramezanpour Z, et al. Chemical compositions of the marine algae Gracilaria salicornia (Rhodophyta) and Ulva lactuca (Chlorophyta) as a potential food source. J Sci Food Agric 2012; 92(12): 2500-6. [DOI]
50. Julien M, Hoffel JM, Flick MR. Oleic acid lung injury in sheep. J Appl Physiol 1986; 60(2): 433-40. [DOI]
51. Pala V, Krogh V, Muti P, et al. Erythrocyte membrane fatty acids and subsequent breast cancer: a prospective Italian study. J Natl Cancer Inst 2001; 93(14): 1088-95. [DOI]
52. Terés S, Barceló-Coblijn G, Benet M, et al. Oleic acid content is responsible for the reduction in blood pressure induced by olive oil. Proc Natl Acad Sci U S A 2008; 105(37): 13811-6. [DOI]
53. Tibbetts SM, Milley JE, Lall SP. Nutritional Quality of Some Wild and Cultivated Seaweeds: Nutrient Composition, Total Phenolic Content, And In Vitro Digestibility. J Appl Phycol 2016; 28(6): 3575-85. [DOI]
54. Becker EW. Micro-Algae as a source of protein. Biotechnol Adv 2007; 25(2): 207-10. [DOI]
55. Gouveia L, Batista AP, Sousa I, et al. Microalgae in Novel Food Products. In Food Chemistry Research. Nova Science Publishers: New York, NY, USA 2008; 75-112. [Article]
56. Fleurence J, Morançais M, Dumay J. Seaweed proteins. Prot food process 2018; 245-262. [DOI]
57. Desmorieux H, Hernández-Sánchez F. Biochemical and Physical Criteria of Spirulina after Different Drying Processes. Proceedings of the 14th International Drying Symposium (IDS), Sào Paulo, Brazil 2004; 900-907. [Article]
58. Stolzenberg-Solomon RZ, Miller ER 3rd, Maguire MG, et al. Association of dietary protein intake and coffee consumption with serum homocysteine concentrations in an older population. Am J Clin Nutr 1999; 69(3): 467-75. [DOI]
59. Wells ML, Potin P, Craigie JS, et al. Algae as nutritional and functional food sources: revisiting our understanding. J Appl Phycol 2017; 29(2): 949-982. [DOI]
60. Alwaleed EA. Biochemical Composition and Nutraceutical Perspectives Red Sea Seaweeds. Am J Appl Sci 2019; 16(12): 346-354. [DOI]
61. MacArtain P, Gill CI, Brooks M, et al. Nutritional value of edible seaweeds. Nutr Rev 2007; 65(12 Pt 1): 535-43. [DOI]
62. Astorga-España MS, Rodríguez-Galdón B, Rodríguez E, et al. Amino acid content in seaweeds from the Magellan Straits (Chile). J Food Comp and Anal 2016; 53: 77-84. [DOI]
63. Cherry P, O'Hara C, Magee PJ, et al. Risks and benefits of consuming edible seaweeds. Nutr Rev 2019; 77(5): 307-329. [DOI]
64. Friedman M. Nutritional value of proteins from different food sources. A Review. J Agric Food Chem 1996; 44(1): 6-29. [DOI]
65. EFSA NDA Panel (EFSA Panel on Dietetic Products, Nutrition and Allergies). Scientific Opinion on Dietary Reference Values for protein. EFSA J 2012; 10(2): 2557. [DOI]
66. Pal MM. Glutamate: The master neurotransmitter and Its implications in chronic stress and mood disorders. Front Hum Neurosci 2021; 15: 722323. [DOI]
67. Wu G. Amino acids: biochemistry and nutrition. 2nd ed. Boca Raton: CRC Press, 2021, 816. [DOI]
68. Paiva L, Lima E, Patarra RF, et al. Edible Azorean macroalgae as source of rich nutrients with impact on human health. Food Chem 2014; 164: 128-35. [DOI]
69. Afonso C, Correia AP, Freitas MV, et al. Seasonal changes in the nutritional composition of Agarophyton vermiculophyllum (Rhodophyta, gracilariales) from the center of Portugal. Foods 2021; 10(5): 1145. [DOI]
70. Duan XJ, Zhang WW, Li XM, et al. Evaluation of antioxidant property of extract and fractions obtained from a red alga, Polysiphonia urceolata. Food Chem 2006; 95(1): 37-43. [DOI]
71. Lim SN, Cheung PC, Ooi VE, et al. Evaluation of antioxidative activity of extracts from a brown seaweed Sargassum siliquastrum. J Agric Food Chem 2002; 50(13): 3862-6. [DOI]
72. Lee HH, Lin CT, Yang LL. Neuroprotection and free radical scavenging effects of Osmanthus fragrans. J Biomed Sci 2007; 14(6): 819-27. [DOI]
73. Saha K, Lajis NH, Israf DA, et al. Evaluation of antioxidant and nitric oxide inhibitory activities of selected Malaysian medicinal plants. J Ethnopharmacol 2004; 92(2-3): 263-7. [DOI]
74. Wang BG, Zhang WW, Duan XJ, et al. In vitro antioxidative activities of extract and semipurified fractions of the marine red alga, Rhodomela confervoides (Rhodomelaceae). Food Chemistry 2009; 113(4): 1101-1105. [DOI]
75. Chandini SK, Ganesan P, Bhaskar N. In vitro antioxidant activities of three selected brown seaweeds of India. Food chem 2008; 107(2): 707-713. [DOI]
76. Abd El-Baky HH, El Baz FK, El-Baroty G. Evaluation of marine alga Ulva lactuca L. as a source of natural preservative ingredient. Am- Euras J Agric Environ Sci 2008; 3(3): 434-444. [Article]
77. Babu M, Johnson D, Patric Raja A, et al. Chemical constituents, and their biological activity of Ulva Lactuca Linn. Int J Pharm Drug Anal 2014; 2(7): 595-600. [Article]
78. Mondal A, Gandhi A, Fimognari C, et al. Alkaloids for cancer prevention and therapy: Current progress and future perspectives. Eur J Pharmacol 2019; 858: 172472. [DOI]
79. O’Connor SE. 1.25 Alkaloids. In: Mander L, Liu HW, editors. Comprehensive Natural Products II: Chemistry and Biology. Elsevier: Oxford, 2010, 977-1007. [Article]
80. Ziegler J, Facchini PJ. Alkaloid Biosynthesis: Metabolism and Trafficking. Annu Rev Plant Biol 2008; 59: 735-69. [DOI]
81. Wada K, Yamashita H. Cytotoxic Effects of Diterpenoid Alkaloids Against Human Cancer Cells. Molecules 2019; 24(12): 2317. [DOI]
82. Netz N, Opatz T. Marine indole alkaloids. Mar Drugs 2015; 13(8): 4814-914. [DOI]
83. Rosales PF, Bordin GS, Gower AE, et al. Indole alkaloids: 2012 until now, highlighting the new chemical structures and biological activities. Fitoterapia 2020; 143: 104558. [DOI]
84. Wibowo JT, Ahmadi P, Rahmawati SI, et al. Marine-Derived Indole Alkaloids and Their Biological and Pharmacological Activities. Mar Drugs 2021; 20(1): 3. [DOI]
85. Singh P, Kaur M, Verma P. Design, synthesis, and anticancer activities of hybrids of indole and barbituric acids--Identification of highly promising leads. Bioorg Med Chem Lett 2009; 19(11): 3054-8. [DOI]
86. Bertinetti B, Scandiani M, Cabrera G. Analogs of antifungal indoles isolated from Aporpium caryae with activity against sudden-death syndrome of soybean. Am J Plant Sci 2011; 2(2): 245-54. [DOI]
87. Kumar A, Kumar D, Akram M, et al. Synthesis and evaluation of some newer indole derivatives as anticonvulsant agents. Int J Pharm Biol Arch 2011; 2(2): 744-50. [Article]
88. Leneva IA, Russell RJ, Boriskin YS, et al. Characteristics of arbidol-resistant mutants of influenza virus: implications for the mechanism of anti-influenza action of arbidol. Antiviral Res 2009; 81(2): 132-40. [DOI]
89. Pojarová M, Kaufmann D, Gastpar R, et al. [(2-Phenylindol- 3-yl) methylene] propanedinitriles inhibit the growth of breast cancer cells by cell cycle arrest in G2/M phase and apoptosis. Bioorg Med Chem 2007; 15(23): 7368-79. [DOI]
90. Kang MC, Ding Y, Kim EA, et al. Indole derivatives isolated from brown alga Sargassum thunbergii inhibit adipogenesis through ampk activation in 3T3-L1 preadipocytes. Mar Drugs 2017; 15(4): 119. [DOI]
91. Kam TS, Subramaniam G, Sim KM, et al. Reversal of multidrug resistance (MDG) by Aspidofractinin-type indole alkaloids. Bioorg Med Chem Lett 1998; 8(19): 2769-72. [DOI]
92. Osuntokun OT, Cristina GM. Bio isolation, chemical purification, identification, antimicrobial and synergistic efficacy of extracted essential oils from stem bark extract of Spondias mombin (Linn). Int J Mol Biol 2019; 4(4): 135-143. [DOI]
93. De Sá Alves FR, Barreiro EJ, Fraga CA. From nature to drug discovery: The indole scaffold as a “privileged structure”. Mini Rev Med Chem 2009; 9(7): 782-93. [DOI]
94. Noleto-Dias C, Wu Y, Bellisai A, et al. Phenylalkanoid glycosides (non-salicinoids) from wood chips of Salix triandra× dasyclados hybrid willow. Molecules 2019; 24(6): 1152. [DOI]
95. Elyasi L, Rosenholm JM, Jesmi F, et al. The Antioxidative Effects of Picein and Its Neuroprotective Potential: A Review of the Literature. Molecules 2022; 27(19): 6189. [DOI]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
